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生长素分泌芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42既刺激根系分泌，又限制根系对磷的吸收小麦

BMC植物生物学体积14、物品编号:51（2014）引用本文

摘要

背景

利用产生生长素的根际细菌作为农产品有望增加根系产量，从而增加磷酸盐(Pi)的吸收。虽然这些细菌在体外促进根的产生，但细菌-植物在活土中相互作用的性质，特别是对养分吸收的影响，尚不清楚。这项研究使用芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42，一种生长素产生的根细菌，作为一种敷料小麦种子。然后研究了对根系生产、Pi吸收、Pi相关基因表达和有机碳(C)渗出的影响。

结果

种子处理b . amyloliquefaciensFZB42在低环境Pi浓度下增加了根产量，但显著抑制了根对Pi的吸收。这与生长素介导的Pi转运蛋白Ta表达的减少相吻合PHT1.8和助教PHT1.10。外源生长素的施用也引起根C分泌量的增加。在较高的外源Pi浓度下，根产量促进了b . amyloliquefaciensFZB42，但Pi的摄取不受影响。

结论

我们得出结论，除了促进根的生产，生长素的生物合成b . amyloliquefaciensFZB42既能重塑Pi转运蛋白的表达，又能提高有机碳的分泌。这表明根细菌衍生的生长素在根表面定植后的潜在重要性，以及这种细菌-植物在土壤中相互作用的性质。

背景

微生物制剂在农业中用作添加剂，有望刺激根系生产，从而增强对水和养分的吸收，抵抗病原体，增强对干旱、盐度和重金属污染等环境胁迫的抵御能力[1- - - - - -10］.土壤微生物也可以在植物养分获取中发挥更直接的作用，特别是对于那些在土壤中本来就较少利用的养分，如磷[11］.微生物代谢依赖于不稳定碳(C)的来源，由于植物根系大量渗出C，根际微生物远比周围块状土壤丰富。细菌只在根表面的一小部分定植，主要是在表皮细胞和周围新出现的侧根分泌C的区域之间的连接处[12，13］.许多根瘤菌通过对植物激素信号过程的影响来增加根的产量:要么通过细菌本身产生激素[14- - - - - -16]或通过扰动内源性浓度[17]或运输[18在植物内部。然而，支持在田间土壤中使用单个菌株或商业混合根瘤菌的积极产量效益的证据是混合的，这表明对所涉及的机制和相互作用的理解不完全。本研究的重点是生长素产生菌芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42，以及由此产生的植物-微生物相互作用的性质涉及植物磷吸收。

生长素是一种植物激素，它调节了大量的根系生物过程，包括在根毛产生、分生组织维持、根向地生长和侧根产生等多种过程中调节细胞分裂和分化。大量根际细菌合成生长素[19- - - - - -21]，并提出这是植物相关物质促进根系生长的原因Azospirillum，芽孢杆菌，假单胞菌和根瘤菌物种(19］.这种生长素的产生被认为是细菌定植机制的一个组成部分，生长素诱导的对根生长和分支的刺激导致细菌定植的可用面积增加，从而增加C的供应[19］.细菌和植物产生生长素的过程已被证明是相似的[18]，通常对环境中的色氨酸(生长素的前体)水平很敏感[14，16，22- - - - - -24］.

微生物接种刺激根产量增加的主要目的之一是增加磷(P)的获取。土壤溶液中可自由利用的无机磷(Pi)的浓度通常很低，因为它倾向于与土壤表面强烈结合或与阳离子形成不溶性复合物[25］.这意味着Pi的可用性通常是植物生长发育的限制因素，因此增加植物搜寻Pi的能力对作物生产是可取的。许多生理因素决定了谷物对磷的吸收效率，包括:侧根分枝和伸长[26];根毛密度[27];有机酸阴离子和磷酸酶向根际的渗出[28];与菌根真菌形成共生[29］.利用生物工程开发这些特性所涉及的技术困难[30.]，加上一些国家不愿接受这类技术，促使人们使用细菌和真菌接种剂来提高作物对磷的吸收能力，从而提高产量[31］.

b . amyloliquefaciensFZB42是一种促进植物生长的细菌，已被证明可促进其定植的根的生长[32］.该菌株已被证明能产生大量的生长素，在培养基中添加色氨酸后产量增加[14］.本研究旨在评估生物相互作用的性质b . amyloliquefaciensFZB42和小麦根系:与假设的任何影响b . amyloliquefaciensFZB42在根上的定殖吸收速率与土壤中磷的浓度有关。作为的主要模式b . amyloliquefaciens目前观察到的fzb42 -根相互作用是生长素的产生[14]，通过分析外源生长素施用对根pi相关基因表达和有机C根渗出的影响，进一步研究了这种相互作用。

结果

芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42对根系生产的影响

在上述实验条件下，应用b . amyloliquefaciensFZB42作为种子敷料刺激t . aestivum低磷和高磷活性土壤的根系产量(图2)1A、B)。处理显著增加了种子根长度(39.1%)和一级侧根长度(51.0%)b . amyloliquefaciensFZB42在低磷土壤中的处理(图1A)，高Pi土壤中单株种子根长度(50.9%)(图2)1B)。

图1
图1

种子敷料b . amyloliquefaciensFZB42在低磷土壤中增加了根系产量，但降低了每根表面积的磷吸收量，而在高磷土壤中则没有。一个-B三周龄植株播种时进行整种处理，每株每根类的总长度b . amyloliquefaciensFZB42或LB培养基作为未经处理的对照，在低Pi (A)或高Pi土壤(B)中生长。C-DA和B处理的植株总Pi含量，用3周后每根表面积获得的总Pi表示。对于A - D，各处理n > 23， *标记值与未处理对照组差异显著(p < 0.05)。误差条是平均值的标准误差(SEM)。

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芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42影响低Pi环境下的Pi吸收

生长3周后每株的平均总磷吸收量在不同处理间无显著差异b . amyloliquefaciens来自未接种对照的FZB42处理(附加文件1:图S1A, B)在低和高pi土壤中。然而，当以单位根表面积表示时，b . amyloliquefaciens经FZB42处理的根系在低Pi土壤中获得Pi的效率明显低于未接种对照(图2)1C)。然而，在未接种对照和未接种对照之间，单位根表面积的终点Pi摄取没有显著差异b . amyloliquefaciensFZB42处理在高磷土壤中的应用(图21D)。

一个星期大，在土里生长，t . aestivum根系生长在高或低外源Pi供应的土壤中:发现b . amyloliquefaciens与未接种对照相比，FZB42种子处理导致在低外部Pi条件下的Pi吸收率降低(图2)2A)。植株的每根表面积的Pi吸收率明显低于对照(图2)2A)，平均植株Pi吸收量为152.4 nmol1(对照)和50.8 nmol工厂1（b . amyloliquefaciensFZB42)。然而，在较高的外源Pi供应下(用2 mM Pi溶液灌溉)，处理之间没有显著差异(图2)2B)，具有较大的根系b . amyloliquefaciensFZB42处理植株平均获得555.6 nmol植株1与458.7 nmol植物相比1控制项的Pi。

图2
图2

b . amyloliquefaciensFZB42仅在低Pi环境下抑制根对Pi的吸收。一个和B从1周龄开始的摄取率t . aestivum用2µl LB培养基或b . amyloliquefaciensFZB42培养，土壤用A 20µM PO浇灌至保持能力43 -或B 2mm PO43 -。两种溶液都加入33P的存在用于监测Pi的摄取。各处理n = 5，经Student 's t检验，*标记值与未处理的控制值有显著差异(p < 0.05)。误差条为SEM。

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的影响芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42对P转运蛋白表达的影响

同时还测定了编码单个细胞Pi转运蛋白的基因的相对表达量。在测试的六种Pi转运蛋白中，发现Ta的相对表达量显著降低PHT1.8和助教PHT1.10，在这两个b . amyloliquefaciensFZB42和IAA处理相对于对照(图2)3.A).在测试的5个pi相关基因中，只有PAP15均无显著性差异b . amyloliquefaciensFZB42处理相对于对照，其表达量比未处理对照增加了2倍以上154.7%(图2)3.B)。这些基因的表达均未受IAA处理的显著影响(图2)3.B)。

图3
图3

b . amyloliquefaciensFZB42处理对根Pi转运蛋白和内部Pi代谢相关基因表达的影响。一个的相对表达aestivum PHT1基因，在根，标准化到肌动蛋白（行为)控制。试验处理为:接种b . amyloliquefaciensFZB42，1µM IAA处理和未处理对照。B的相对表达t . aestivum根中的代谢基因，标准化到肌动蛋白（行为对于A和B，每个处理n = 3，误差条为SEM，使用Student 's t检验，*标记值与未处理的控制值显著不同(p < 0.05)。

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IAA对根系分泌物的影响

IAA在1周龄的外源施用t . aestivum用3- o - m -葡萄糖作为糖渗出的标记来评估根系。当以根系表面积的函数表示3- o - m -葡萄糖释放量时，施用1mm IAA显著增加(图2)4）.

图4
图4

外源IAA的施用使C渗出速率增大t . aestivum根。的释放速率14C标记1周大的3- o - m葡萄糖t . aestivum根系浸泡在1µM IAA或未经处理的去离子水对照中。每个处理n = 5，误差条为SEM，经Student 's t检验，*标记值与未处理的控制值显著不同(p < 0.05)。

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讨论

生长素介导的生物刺激t . aestivum根系生长是以吸收π为代价的

本研究提供了新的实验数据，证明了根际植物与微生物相互作用的复杂性。b . amyloliquefaciens与大部分根际微生物一样，FZB42在与植物相互作用时分泌生长素[14］.本研究结果表明，外源生长素应用于植物的生长发育t . aestivum根系虽然能够刺激根系产量的增加，但也降低了低磷土壤单位根表面积的根吸收率(图2)1C,图2一个)。

根磷的吸收是由磷酸盐转运蛋白(PHT)介导的+利用电化学梯度驱动π和质子同调进入植物的同调体[33］.在t . aestivum助教PHT基因家族被提出编码一组密切相关的高亲和力磷酸盐转运蛋白，其在根组织中的表达已被证明增加(TaPht1.1 & 1.9, 1.2, 1.8, 1.10)或不变(TaPHT1.6)，以回应根Pi供应的减少[34，35］.助教Pht1.1 & 1.9, 1.2和1.10相反，在田间条件下，低磷供应会导致表达减少，但这是由于高水平菌根定植的影响[34］.已知TaPHT1.8和助教PHT1.10在低Pi环境下生长的根中有显著上调表达[34]，所显示的Pi吸收率较低b . amyloliquefaciens本研究中FZB42在低Pi条件下处理植株(图2)1C、图2A)可以被解释为b . amyloliquefaciensFZB42处理降低TaPHT1.8和助教PHT1.10表达式(图3.一个)。b . amyloliquefaciensFZB42对Ta的处理效果PHT1.8和助教PHT1.10外源IAA的应用也模仿了这一表达，这强烈暗示这至少部分是生长素介导的过程，因此是该过程的内在组成部分b . amyloliquefaciensfzb42 -根相互作用(图3.因此，我们建议b . amyloliquefaciensFZB42生长素的产生降低了根TaPHT1.8和助教PHT1.10表达，直接导致盆栽实验中观察到的植物Pi吸收水平下降(图2)1C)。这种效应可能使生长素产生的根瘤菌在低磷土壤中更好地竞争局部磷:生长素的施用先前已被证明会扰乱PHT基因在拟南芥［36]，以及微生物重新建模PHT利用丛枝菌根真菌也证实了表达[37，38］.我们的研究结果对生长素在未来生物技术应用中的应用具有启示意义。具体地说，生长素或生长素产生微生物的使用，以刺激根生产应该仔细映射到环境磷条件，以确保最佳的磷吸收，植物生长和产量。

内部p动员基因表达

治疗b . amyloliquefaciensFZB42导致PAP15表达，而水平PAP16，IPS1.1和RNS不变(图3.B)PAP15表达可能是植物为了回收更多的磷而进行的一种稳态调节，以抵消植物释放的生长素导致的磷吸收减少b . amyloliquefaciensFZB42治疗。缺少一个IPS1.1的表达式响应b . amyloliquefaciensFZB42和IAA处理的根表明，生长素对植物Pi基因表达的影响是微妙的，而不是感知Pi状态的整体转变。

芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42种子在高磷土壤中的处理

与低磷土壤相比，土壤对土壤养分的负影响不显著b . amyloliquefaciensFZB42处理对高磷土壤中磷吸收的影响(图2)1D、图2B).这可能是由于Ta的表达水平不变PHT1.2,助教Pht1.1 & 1.9(图3.A)在高Pi环境中仍然表达，或者Ta的存在PHT1.6在根中独立于环境Pi浓度表达[24］.助教PHT1.10发现在b . amyloliquefaciensFZB42处理(图3.A)，但也与Ta高度同源PHT1.2和助教Pht1.1 & 1.9［35］.这意味着，尽管它们的功能相似，但它们的表达受到不同因素的控制。

b . amyloliquefaciens然而，FZB42处理确实对高磷土壤中的植物根系产生了有益的影响(图2)1B)这意味着，在这些条件下，植物能够实现大根系的许多好处，例如增加对水和养分的吸收，而不会抑制每根表面积的Pi吸收量。有趣的是，这种增加的幅度远小于低Pi土壤，可能是由于这种影响部分被提高环境Pi后通常观察到的根伸长和根分枝的增加所淹没[39］.因此使用b . amyloliquefaciens在高Pi土壤中处理FZB42，或与传统的Pi施肥一起，对农业系统有潜在的好处:在本研究中，在低Pi环境中观察到的生长素增加了根的产量，而对Pi的吸收没有任何负面影响(图1)2A、B)。

刺激根有机碳的分泌为根细菌生长素的产生提供了新的思路

由于大多数农业土壤中微生物的代谢速率受到易失性碳化合物有效性的限制[40]，根系有机碳渗出速率对微生物群落有很大影响。这导致根际的细菌数量比散装土壤高[41］.据估计，多达80%的细菌种群在根际产生生长素，假设它们是通过生长素刺激根生产而增加可定植根面积的受益者[20.，21］.本研究结果如图所示4表明由此引起的根际生长素浓度升高可以刺激植物根系糖的净渗出量增加。由于谷物根中糖的渗出在很大程度上是一个被动过程[42]，这可能意味着生长素(1)下调了质膜H+- atp酶驱动己糖H+-共同运输，重新获得从根部失去的糖，或(2)增加膜通透性，促进更快的外排。后一种假设得到了研究的支持t . aestivumIAA处理后的愈伤组织培养和玉米膜囊泡的膜通透性和离子漏出率较高，对H的直接影响最小+- atp酶功能[43，44］.在目前的研究中，仅在一小时后就可以测量到这种增加的糖损失，这意味着它可能是植物根系对生长素的直接反应，而不是间接影响。这是一种以前未被描述的细菌生长素产生的效应，未来研究的重点是评估与应用生长素剂量的关系，参考根际细菌群落的已知生产速率。

本研究结果如图所示4也有更广泛的影响机制，通过有机分子渗出的速率由植物的根是控制。有证据表明，由于缺乏π，许多物种的根会分泌有机酸，从而取代土壤中无机沉淀物中的π [45］.根尖和根毛已被证明是这种渗出物的主要部位[46，47]，根尖也是生长素反应显著的最大位点，其模式受到严格控制[48］.因此，根尖内生长素通量的改变是控制根系碳渗出的潜在机制。在低磷环境下，这一过程可以协同促进根对磷的吸收，因为渗出的有机酸阴离子浓度更高:从不溶性土壤复合物中化学取代磷[49]，并增加根际微生物可利用的不稳定碳源，这可能加速土壤有机磷的生物动员[50］.

长寿的芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42治疗效果

直接地33本研究的Pi摄取实验b . amyloliquefaciens1周后，FZB42处理导致低Pi状态土壤中Pi吸收量的比例更大(图2)2A)比三周盆栽试验结束时观察到的多(图2)1C)，因此，在生长的第一周之后，有可能b . amyloliquefaciensFZB42在根表面日益被内源土壤微生物所取代[11，51］.这个假设是b . amyloliquefaciens种皮的FZB42定殖可以使根表面定殖，如图芽孢杆菌治疗玉米种子(52］.然而，即使是这种情况，在根发育的关键前三周内建立的更大的根系t . aestivum很可能会持续下去。因此，这将为增加作物产量提供潜在的长期效益。

结论

对增加农业粮食生产的需求的一个后果是生物刺激产品的使用增加，这种产品的销售是以增加作物养分吸收为基础的，其成本远低于在肥料中额外施用养分的成本。b . amyloliquefaciens与许多根际微生物一样，FZB42产生生长素，这可能是其与作物根系相互作用的主要组成部分t . aestivum。研究表明b . amyloliquefaciensFZB42生长素的产生可以驱动高亲和力Pi转运体Ta的表达降低PHT1.8和助教PHT1.10同时，根系从低磷浓度土壤中吸收磷的能力也会降低。同时b . amyloliquefaciensFZB42对种子根和侧根的早期生长均有较大的促进作用t . aestivum。本文提出的结果提供了新的见解，复杂的生物相互作用之间的t . aestivum根系和根际产生生长素的细菌，以及这些不同影响对作物磷营养的潜在权衡。根对磷的吸收因添加b . amyloliquefaciensFZB42，以及它与土壤Pi浓度的相互作用，强调了在提倡在农业中广泛应用之前，获得任何新的微生物菌株与作物根系在一系列环境条件下相互作用的详细了解的重要性。这将减少意外不利影响的风险，确定不同产品的功效如何随环境条件而变化，并向农民提供证据，以便对此类产品与替代品相比的价值进行知情的成本效益分析。

方法

盆栽试验生长条件

文化的解淀粉芽孢杆菌FZB42(Bacillus Genetic Stock Center, Columbus, OH, USA)在Luria Broth (LB)培养基中在旋转摇床中培养，直到达到600 nm (OD)的光密度600) 3.0 (2.1 × 10)10CFU毫升1）.小麦然后将商业品种PARAGON (RAGT seeds Ltd, Saffron Walden, UK)的种子涂上2µl该溶液或未经处理的LB培养基(未经处理的对照)。这种种子包皮反映了商业提供的细胞密度b . amyloliquefaciensFZB42含有产品Biomex Starter (6.25 × 1010CFU毫升1;OMEX农业有限公司)。通过在LB琼脂板上连续稀释培养基来评估细胞密度。处理过程中多余的水被蒸发掉。然后将三颗种子种在每个直径8厘米的罐子里，罐子里装满300克两种土壤中的一种。所使用的土壤均为沙质壤土，植物有效磷(Olsen P)浓度为14.5 mg kg1(英国Abergwyngregyn;表1,图1A,C)和36.5 mg kg1(英国Thonock;表1,图1B, D)。然后将花盆放置在保持在20°C的气候控制温室中，并辅以人工照明(光强= 260µmol m)2年代1PAR)，最小光周期为16小时。出苗期减苗至1株/盆，每周浇水3次，保持盆内土壤80%的持水量。土壤持水量用重量法测定[53］.为了确保磷是唯一的限制性常量养分，相当于60 kg ha1N(等于1mnh4没有3.溶液)和60公斤公顷1幼苗出苗时，每盆施钾(1 M氯化钾溶液)。微量营养素通过每周施用10ml含有5 mM Ca的溶液来控制;3.87 mM Fe;3.87µM Na;765µM Zn;2mm SO4;320 nM Cu;46.3 nM BO3.;500µM Mo;9.1 nM Mn;18µM Cl;38.7µm edta。

表1盆栽试验中土壤的特性
全尺寸工作台

盆栽试验测量

播种后21天收获植株。根在蒸馏水中彻底清洗，在透明塑料托盘中浮在水面上，并使用平板扫描仪扫描(完美4990照片;爱普生电子美国公司，圣何塞，加州，美国)。使用WinRhizo®软件(Regent Instruments Inc.， Canada)处理得到的图像，以确定每株种子根和侧根的长度，以及得到的根系表面积。软件采用的边界条件为:直径≥0.350 mm的根归类为种子根，直径< 0.350 mm的根归类为侧根(J. Heppell, Personal communication)。整个植株在85°C下干燥过夜，称重并干燥(550°C, 16 h)。将残留物溶解在0.5 M HCl中，然后使用Murphy & Riley的抗坏血酸/钼酸盐蓝法测定其P含量，[54］.

直接Pi吸收测量

按照上述方法种植另一组植物，但在播种一周后，用20µM或2mm K浇灌土壤至保持能力2HPO41 kBq ml的溶液133P(美国放射性标签化学品公司，圣路易斯，密苏里州，美国)。在20°C孵育24小时后，收获植株，清洗，使用WinRhizo®测量根表面积，如上所述。整株在85°C下干燥过夜，然后干燥(550°C, 16 h)。将残留物溶解于0.5 M HCl中33用Wallac 1404闪烁计数器(Wallac EG&G, Milton Keynes, UK)定量所得溶液的P含量。的数量33在植物中发现的P，除以的量33加入土壤的磷乘以加入土壤的溶液的总磷浓度，然后计算根系获得的施磷量。

有机碳渗出试验

植株与盆栽试验一样种植，但在播种一周后完整收获，根系被轻轻冲洗以去除土壤，然后浸入1mm 3- o -甲基- d -葡萄糖溶液(3- o -m -葡萄糖)。3- o -m -葡萄糖是一种不可代谢的葡萄糖类似物，通常用于量化糖通过植物和动物膜流入和流出的速率[55- - - - - -58］.3-O-M葡萄糖溶液中加入1 kBq ml1的14c -3- o - m -葡萄糖(美国放射性标签化学公司，美国)。24小时后，更换根浴液去除任何残留14C-labelled 3-O-M-glucose。然后用去离子水或1µM生长素吲哚乙酸(IAA;Sigma Aldrich, Poole, UK)和根孵育1小时，以确定3- o - m -葡萄糖外排的净速率。这种单糖外排的变化通常是快速的过程[56- - - - - -58]，就像许多生长素反应一样[59]，因此一小时被认为足以评估任何影响。植物被移走后14用Wallac 1404闪烁计数器(Wallac EG&G, Milton Keynes, UK)定量根浴液的C含量。然后按照上述方法使用WinRhizo®测定每株植物的根系表面积。

定量RT-PCR分析

t . aestivum将种子浸泡在带气的去离子水中过夜，使其提前发芽。然后将种子放入含有滤纸的培养皿中，滤纸浸泡在含有5.5 mM K的改良霍格兰溶液中;110mm NO3.;1mm NH4;5 mM Ca;3.87 mM Fe;3.87µM Na+;765µM Zn;2mm SO4;320 nM Cu;46.3 nM BO3.;500µM Mo;9.1 nM Mn;18µM Cl;38.7µM EDTA和5µM PO4。种子被b . amyloliquefaciens盆栽试验制备FZB42(和阴性对照)，低Pi培养基中加入1µM IAA处理。然后将植株在20℃下孵育40 h。然后去除根，将5株植物的所有种子根形成一个重复(每个处理使用3个这样的重复)，并使用GeneMATRIX RNA/miRNA纯化试剂盒(Roboklon, Berlin, Germany)提取总RNA。然后使用dART RT (Roboklon, Germany)试剂盒使用oligo d(T)引物从该RNA提取物构建cDNA。使用Applied Biosystems thermocycler (Life Technologies Ltd, Paisley, UK)和SYBR Green qPCR混合物(Roboklon, Germany)进行定量RT-PCR，并使用Teng发表的引物对归一化为肌动蛋白[GenBank: AB181991]对照进行归一化等。［34］.检测的基因有:推定的Pi转运蛋白编码基因TaPht1.1 & 1.9[GenBank: AJ344241]PHT1.2[GenBank: AJ344240]PHT1.6[没有发表的序列]，TaPHT1.8[GenBank: AJ830009]PHT1.10【未发表序列】;IPS1.1[Genbank: EU753150.1]是植物磷饥饿的分子标记，其表达与植物磷状态相关[34，60，61];PAP15[GenBank: CJ554973]和PAP16[未公布序列]基因编码紫色酸性磷酸酶[34]能水解磷酸酯和酸酐，帮助植物循环利用磷，并调动土壤中的有机磷[62];和RNS[GenBank: AY517470]编码s样核糖核酸酶，从RNA中重组P [j]。63］.

统计分析

整个过程中使用的显著性统计检验是学生t检验，使用MS Excel (Microsoft Corp.， Redmond, WA, USA)进行。只有p < 0.05的值被认为有显著差异。

缩写

病人:

磷

Pi:

磷酸

C:

碳。

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下载参考

致谢

作者要感谢环境、食品和农村事务部、生物技术和生物科学研究委员会以及苏格兰政府在可持续耕地链接项目(LK09136)下为这项工作提供资金。

作者信息

从属关系

  1. 班戈大学自然科学学院环境、自然资源与地理学院，英国格温内斯郡班戈，LL57 2DG

    彼得·J·托尔博伊斯，达伦·W·欧文，约翰·R·希利，保罗·JA·威瑟斯和大卫·L·琼斯

作者
  1. 彼得·J·托尔博伊斯
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  2. 达伦·欧文
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  3. 约翰·R·希利
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  4. 保罗·贾·威瑟斯
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  5. 大卫·琼斯
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相应的作者

对应到彼得·J·托尔博伊斯。

额外的信息

相互竞争的利益

这项工作得到了环境、食品和农村事务部、生物技术和生物科学研究委员会以及苏格兰政府在可持续耕地链接项目(LK09136 to P.J.T)下的支持。这个LINK项目的一个联盟成员是Omex农业有限公司，其Biomex Starter产品含有芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42。

作者的贡献

PJT参与了研究的设计，执行了实验程序，分析了数据并参与了手稿的起草。DWO参与了研究的设计，进行了实验，并分析了数据。JRH、PAW和DLJ参与了研究的设计、数据分析和手稿的起草。所有作者都阅读并批准了最终稿件。

电子补充资料

12870 _2013_1475_moesm1_esm.jpeg

附加文件1:图S1:用b . amyloliquefaciensFZB42对生长3周后植物生物量、总磷吸收量或植物磷浓度的影响。这是一项为期三周的盆栽试验的结果b . amyloliquefaciensFZB42或LB培养基作为未经处理的对照，在低Pi (A, C, E)或高Pi土壤(B, D, F)中生长。C - D单株总干物质产量;植物组织中E - fp的浓度。对于A - F n > 23的各处理，误差条为SEM，采用Student 's t检验，各处理间差异不显著(p > 0.05)。(jpeg 96 kb)

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托尔博伊斯，p.j.，欧文，d.w.，希利，J.R.et al。生长素分泌芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42既刺激根系分泌，又限制根系对磷的吸收小麦。BMC Plant Biol14日,51(2014)。https://doi.org/10.1186/1471-2229-14-51

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关键字

  • 芽孢杆菌amyloliquefaciensFZB42
  • 种子处理
  • 小麦
  • 生长素
  • 磷酸
  • 根
  • 分泌

BMC植物生物学

ISSN: 1471 - 2229

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